尊龙凯时推出的间充质干细胞成脂诱导分化试剂盒，货号：YJ-MSCYD-004，现售价12800元，提供规格为100ml和200ml的两种选择。

产品描述

本试剂盒经过我们团队的精心优化，旨在提升间充质干细胞向成脂细胞的诱导分化能力。请注意，本产品仅限于科研使用，严禁用于诊断、治疗、临床、家庭及其他用途。

产品组成及保存

注意事项：为了确保产品的有效性，请避免反复冻融。配制好的诱导培养基应保存于2-8℃，并在2周内使用完毕，请根据实验需要进行合理配制。

使用说明

1. 完全培养基的配制

①在室温下融化各因子及血清，融化后进行瞬时离心，确保溶液集中于离心管底部。（注意：因子或血清中出现沉淀属正常，无需过滤，以免损失成分。）

②根据实验需要，在无菌操作台中配制诱导分化完全培养基，建议每次配制50mL，具体配制比例如下：

2. 成脂诱导分化实验步骤

① 建议使用第3至第5代、纯度达到90%以上且状态良好的间充质干细胞，将其消化后离心收集，使用含10% FBS的完全培养基调整细胞密度并均匀铺于培养瓶或板中，放置于37℃、5% CO2、饱和湿度的培养箱中培养。

② 当细胞汇合度达到80%至100%时，可以进行诱导分化。

③ 小心吸弃培养上清，沿孔壁缓慢加入事先配制好的诱导分化完全培养基，继续在37℃培养箱中孵育。（注意：在加入完全培养基之前应预热至37℃。）

④ 每2至3天更换一次新鲜的诱导分化完全培养基。如发现细胞培养上清颜色趋于澄清的黄色，说明细胞量较大，培养基消耗较快，应缩短更换周期。（注意：完全培养基加入前需预热。）

⑤ 细胞诱导3周后，即可进行油红O染色鉴定。

3. 油红染色分析

① 在细胞诱导分化结束后，小心吸弃培养上清，用1×PBS清洗1至2次，随后加入适量的细胞固定液，在室温下固定30分钟。（具体固定液参考表格中信息。）

② 配制油红O工作液：将油红O贮存液与蒸馏水按照3:2比例混合（例如：3mL油红O贮存液与2mL蒸馏水），混匀后用滤纸过滤，收集滤液得油红O工作液。（注意：成脂细胞内的油滴极易脱落，操作时请小心。）

③ 吸弃固定液，用1×PBS洗涤2次，沿孔壁缓慢加入适量油红O工作液，在室温下染色30分钟。（注意：操作时避免触及工作液底部的沉淀。）

④ 吸出染色液后，再用PBS洗涤以去除多余的染色，最后在显微镜下观察细胞染色效果，细胞内油滴呈红色。（注意：油红O工作液不可重复使用，不建议回收。）

通过使用尊龙凯时的间充质干细胞成脂诱导分化试剂盒，您可以更高效地开展细胞分化研究，推动生物医学领域的创新与发展。